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植物體內(nèi)脫落酸、赤霉素的分離和測定
點(diǎn)擊次數(shù):839 更新時間:2020-07-23

在研究植物生命活動過程中,常常需要準(zhǔn)確了解某一激素的含量以及各激素間的比例。因此,植物內(nèi)源激素的提取分離和測定是植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)中極其重要的內(nèi)容。本實(shí)驗(yàn)以ABA和GA為例,介紹激素的提取、分離及測定的基本原理和方法。

一、原理

利用脫落酸(abscisic acid,ABA)和赤霉素(gibberellic acid,GA)能溶解于有機(jī)溶劑(如丙酮、甲醇)的特性進(jìn)行提取,將粗提物經(jīng)過一系列的分離技術(shù)(如萃取、薄層層析或紙層析等),使ABA、GA與其它成分分離。再對純化的ABA和GA進(jìn)行生物學(xué)鑒定或物理化學(xué)鑒定。

(一)生物鑒定1.ABA能抑制植物器官的生長,在一定的濃度條件下,其抑制程度與濃度呈線性關(guān)系。利用這一線性關(guān)系就可確定組織中ABA的含量。2.GA能刺激幼嫩植物的節(jié)間伸長,特別是矮生植物的莖。在一定濃度范圍內(nèi),莖的伸長度與GA濃度呈線性關(guān)系。因此,根據(jù)莖的伸長度就可確定GA的含量。

(二)物理化學(xué)鑒定:可采用氣相色譜法。

 

 

二、材料、儀器設(shè)備及試劑

(一)材料:植物葉片、水稻種子及幼苗等;

(二)儀器設(shè)備:1.氣相色譜儀;2.分液漏斗;3.組織勻漿器;4.旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)干燥器;5.層析缸;6.華特曼-3號層析紙;7.微量注射器。

(三)試劑:1. 100%甲醇;2. 80%甲醇;3. 石油醚;4. 乙酸乙酯;5. 1mol/LHCl;6. 硅酸GF232;7. 氯-仿;8. GA;9. ABA;10. 乙醇;11. 正丁醇;12. 異丙醇;13. 3mol/L氨水。

三、實(shí)驗(yàn)步驟與結(jié)果計(jì)算

(一)脫落酸和赤霉素的提取和分離

1.樣品提取(1)取新鮮材料或貯存材料(用100%甲醇固定,放置-10℃冰箱中至待測時)10g,剪碎,加入60ml預(yù)冷(<0℃=的80%甲醇溶液,勻漿5min,勻漿液在4℃下振蕩(或攪拌)24h,過濾。殘?jiān)儆?0ml甲醇液振蕩1h。反復(fù)二次,濾液混合。(2)將濾液在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上干燥減壓蒸發(fā)(36~38℃)至原體積一半,再加入10ml石油醚提取部分色素,將下層甲醇液取出,棄掉石油醚層,繼續(xù)減質(zhì)濃縮至水溶液。在此水溶液中含有IAA、ABA、GA和CTK等。

2.樣品萃取將水溶液用1mol/LHCl調(diào)pH至2.8~2.5左右。并以與水溶液等體積的乙酸乙酯萃取。將混合溶液裝入分液漏斗,分離水相和乙酸乙酯相。取水相再用乙酸乙酯萃取2次。合并乙酸乙酯溶液。此時,CTK(細(xì)胞分裂素)存在于水相中,而ABA、GA、IAA存在于乙酸乙酯中。

3.樣品的純化(1)將乙酸乙酯溶液用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器濃縮至干。用2ml100%甲醇溶解殘留物。(2)點(diǎn)樣:取100μl甲醇溶液點(diǎn)在涂有硅膠GF254玻板下端1cm處(或點(diǎn)在華特曼3號層析紙上),并在同一水平上分別點(diǎn)上標(biāo)準(zhǔn)GA和ABA溶液100μl。(3)展層:用異丙醇-28%氨水-水(10∶1∶1,V/V/V)作為展層劑展層。前沿至玻板頂端0.5cm處即停止展層。(4)定位:層析完畢后,吹干玻板并在紫外燈下觀察色帶,與標(biāo)準(zhǔn)ABA和GARf值相同或相近的色帶,就作為純化后的ABA和GA。(5)洗脫:將ABA和GA帶分別括下(或剪下),用95%乙醇浸提3次。溶液經(jīng)減壓蒸干后,即可進(jìn)一步作生物學(xué)測定或氣相色譜測定之用。

(二)ABA和GA的測定

1.ABA的生物學(xué)鑒定

(1)材料培養(yǎng):精選小麥種子,25℃黑暗下浸種2h,排于培養(yǎng)皿濕濾紙上,在25℃下發(fā)芽。待胚根出現(xiàn)后,移入培養(yǎng)缸中的塑料網(wǎng)上,繼續(xù)在25℃暗中培養(yǎng)。約72h后,選取胚芽鞘2.8~3.0cm的幼苗,用刀片自頂端分別切成3mm,5mm,5mm三小段,取中間5mm切段置蒸餾水中2~3h,備用。

(2)ABA母液(200μg/ml)的配制:稱取20mgABA,溶于少量酒精,以無離子水定容至100ml。

(3)標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制:吸取5ml母液,加無離子水定容至100ml,即為10μg/ml。吸取5ml10μg/mlABA溶液,用2%蔗糖-0.01mol/L磷酸緩沖液(pH5.0)定容至50ml,即為1μg/mlABA標(biāo)準(zhǔn)液。余此類推,分別配成0、0.001、0.01、0.1、1μg/ml標(biāo)準(zhǔn)液。

(4)標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制:取2ml各種濃度的ABA標(biāo)準(zhǔn)液分別置入10ml具塞試管,每管加入小麥芽鞘切段10根。各濃度均需3~4個重復(fù)。加塞后,置暗處25℃搖床上振蕩20h。將10個切段取出測定其總長度(cm),然后按下列公式計(jì)算處理后減少的百分?jǐn)?shù)(R):R(%)=(D空-D處理)/D原×100。

式中:D空:空白總長度;D處理:處理總長度;D原:原始總長度(5.0cm)。用R與ABA濃度的相關(guān)性,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

(5)將待測樣品溶于2ml2%蔗糖-0.01mol/L磷酸緩沖液(pH5.0),置具塞試中,按上述步驟操作,算出R值,再查標(biāo)準(zhǔn)曲線,就得到ABA濃度C,依下式計(jì)算出樣品中ABA含量:ABA含量(μg/g鮮重)=C(μg/ml×2×10-1/W(g)2.ABA的氣相色譜測定將洗脫的ABA加入0.1mlBSA(N.O-二-*基硅烷基乙酰胺)使脫落酸硅烷化。0.5h后,吸取5μl作氣相層析,層析條件:柱長2m,φ5mm(不銹鋼柱)、固定相為10%SE-30,DMCS、A、W為擔(dān)體,進(jìn)樣口溫度250℃,柱溫200℃,F(xiàn)ID檢測。載氣流速為30μl/min,采用內(nèi)標(biāo)法定性,外標(biāo)法定量。計(jì)算:ABA含量(μg/g鮮重)=A1×Ws×100×1/(As×5×W)

 

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